一、實驗原理

通過機械劃痕在單層腫瘤細胞上制造無細胞區域，觀察邊緣細胞向空白區遷移的能力，模擬體內腫瘤轉移過程
。

二、關鍵步驟

1. ?細胞鋪板?

• 使用6孔板，接種密度為5×10?個細胞/孔（具體依細胞類型調整），過夜培養至90%融合度
  。

• 鋪板后輕拍培養板兩側（非四邊）使細胞分布均勻
  。

2. ?劃痕制作?

• 用滅菌200μL槍頭或牙簽垂直接觸板底，勻速劃出直線（可借助直尺對齊）
  。

• 每孔劃1-3道，劃痕寬度建議500μm（Culture Insert法可標準化寬度）
  。

3. ?清洗與培養?

• PBS輕柔沖洗3次去除脫落細胞，換用含1-2% FBS的培養基抑制增殖干擾
  。

• 加入絲烈霉素（4μg/mL）可進一步阻斷增殖，純化遷移效應
  。

4. ?圖像采集與分析?

• ?時間點?：0h、12h、24h（依細胞遷移速度調整）
  。

• ?定位標記?：提前用Marker筆在板底畫網格線確保同一視野
  。

• ?量化方法?：

• 遷移率 = (初始寬度 - 終點寬度) / 初始寬度 ×100%。

三、注意事項

1. ?細胞狀態?

• 選擇高活力（>95%）且低自發凋亡的腫瘤細胞系
  。

• 避免過度消化，吹打時使用含血清培養基終止反應
  。

2. ?劃痕一致性?

• 槍頭需垂直板底，壓力均勻，多孔實驗建議同一人操作
  。

• 預實驗確定最佳劃痕寬度（過窄易愈合，過寬難遷移）
  。

3. ?干擾控制?

• 排除增殖影響：低血清培養基或絲裂烈素處理
  。

• 溫度穩定：操作全程在37℃恒溫臺進行，減少熱應激

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